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植物组织培养是把植物的器官,组织以至单个细胞,应用无菌操作使其在人工条件下,能够继续生长,甚至分化发育成一完整植株的过程。植物的组织在培养条件下,原来已经分化停止生长的细胞,又能重新分裂,形成没有组织结构的细胞团,即愈伤组织。这一过程称为“脱分化作用”,已经“脱分化”的愈伤组织,在一定条件下,又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官,这一过程称“再分化作用”。植物激素在此过程中起着重要的作用,吲哚乙酸( IAA )和 6 –苄基氨基腺嘌呤( 6 – BA )的比例,决定了根和芽的分化。
近年来,组织培养作为一种研究技术,已广泛地应用于许多学科中,它不仅对理论研究有重要意义,并已展现了十分广阔的应用前景。
一、原理
植物组织经过脱分化作用,形成愈伤组织,经过再分化作用,愈伤组织又能重新分化为有结构的组织和器官,最终形成完整的植株。早在 1957 年 Skoog 即发现培养基中植物激素的类型和它们的比例,对再分化过程起着重要的作用。
二、试剂与仪器设备
(一)试剂
• 乙醇。
• IAA 或 2 , 4 – D 。
• HgCl 2 (或次氯酸钠)。
• 6- 苄基氨基腺嘌呤( 6-BA )
• MS 培养基(见附录)。
(二)仪器设备
培养室,高压灭菌锅,水浴锅,解剖刀,三角烧瓶( 100mL ),烧杯,量筒,培养皿,棉线,接种箱或超净工作台,分析天平,长镊子,剪刀,容量瓶,移液管,牛皮纸。
三、实验步骤
1. 配制培养基
( 1 )愈伤组织诱导培养基: MS 培养基(蔗糖含量为 10 g/L , 2,4 – D 含量为 2 mg/L ,琼脂 10 g/L )。
( 2 )试验培养基:在 MS 培养基中按表 33 – 1 加入 IAA 和 6–BA 。
吲哚乙酸先用少量 0.1 mol/L NaOH 溶解, 6- 苄基氨基腺嘌呤先用少量 0.1 mol/L HCl 溶解,然后用蒸馏水稀释,再加入培养基中。
表 33 – 1 试验培养基中 IAA 和 6 – BA 含量
|
序号 |
IAA ( mg/L ) |
6-BA ( mg/L ) |
相对比值 |
|
1 |
0 |
2.0 |
|
|
2 |
0.2 |
2.0 |
1:10 |
|
3 |
0.5 |
2.0 |
1:4 |
|
4 |
1.0 |
2.0 |
1:2 |
|
5 |
2.0 |
2.0 |
1:1 |
|
6 |
2.0 |
1.0 |
2:1 |
|
7 |
2.0 |
0.5 |
4:1 |
|
8 |
2.0 |
0.2 |
10:1 |
|
9 |
2.0 |
0 |
|
2. 培养基灭菌
将配好的培养基加入琼脂加热溶解,调至 pH 5.8 ,趁热分装于 100 mL 三角烧瓶中,每瓶约 20 mL 。待培养基冷却凝固后,用一层称量纸和一层牛皮纸包扎瓶(管)口,并用棉线扎牢,然后在高压灭菌锅中 121 ℃( 1 kg/cm 2 )下灭菌 20 min 。取出三角烧瓶放在台子上,冷却后备用。接种操作所需的一切用具(如长镊子、解剖刀、剪刀等)及灭菌水,需同时灭菌。
3. 诱导产生愈伤组织
( 1 )取健壮的烟草茎数段,每段约 5 cm 长,于烧杯中用 0.1% 氯化汞(升汞)浸泡 20 min ,取出用无菌水洗 3 ~ 4 次,置于无菌培养皿中,在接种箱中按无菌操作要求剥去外皮(接种箱事先用紫外灯灭菌 30 min ),用解剖刀切成 5 mm 厚的圆片(弃去开始一片和最后一片),用长镊子将它接种在诱导培养基上,注意圆片的切口朝向培养基,每瓶接种 4 片,接种后扎好瓶口。
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