（6）刺激迷走神经外周端 待血压基本稳定后，结扎并剪断右侧迷走神经，电刺激迷走神经外周端，观察血压和心率的变化。待血压变化明显时停止刺激。
（7）刺激内脏大神经 待血压基本稳定后，用保护电极刺激内脏大神经，观察血压和心率的变化（注：刺激前需分离内脏大神经）。
（8）刺激减压神经 在血压基本恢复正常后，双重结扎减压神经，并在两结扎线中间剪断减压神经，分别用中等强度电流刺激减压神经的中枢端和外周端，并同时作标记。观察心率与血压变化，待血压出现较明显变化后，停止刺激。
（10）失血 待血压基本稳定后，调节三通管使动脉插管与50 ml注射器相通，放血50 ml。之后立即用肝素生理盐水将插管内血液冲回兔体内，以防动脉插管内凝血，并作标记，观察记录心率与血压的改变。
[注意事项]
（1）本实验麻醉应适量，麻醉药注射速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。如果实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药物。
（2）仪器和动物要接地，并注意适当的屏蔽。
（3）每观察一个项目，必须待血压和心率恢复正常后，才能进行下一个项目。
（4）每次静脉注射完药物后应立即推注0.5 ml
生理盐水，以防止药液残留在针头内及局部静脉中而影响下一种药物的效应
（5）实验中注射药物较多，要注意保护耳缘静脉。
（6）实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端后再拔除动脉插管。
[实验结果]
剪贴各项记录曲线，每项实验记录必须包括实验前的对照、实验开始的标记及实验项目
的注释。比较各种处理前后血压和减压神经放电有何变化，分析血压和减压神经放电之间存在何种关系（图7.10-5、7.10-6）
[思考题]
1.正常血压曲线的一级波、二级波及三级波各有何特征？其形成机制如何？
2.动物动脉血压是怎样形成的？如何受神经体液调节？
3.短时间夹闭右侧颈总动脉（未插管一侧）对全身的血压和心率有何影响？若夹闭部位在颈动脉窦上，影响是否相同？
4.试分析以上各种实验因素引起动脉血压和心率变化的机制。
5.如何证明减压神经是传入神经？
※[补充] 此实验也可选用鸭、鳮、鹅做实验对象，现将标本制备简要介绍如下：
须增加一个禽类固定台（图7.10-7）。
1.麻醉和固定 取只鸭称重，氨基甲酸乙酯溶液按3.5～4 ml·(kg体重)-1作腹腔注射,约15min麻醉奏效后背位或侧位固定。
2.分离颈部两侧迷走神经 从喉下部2 cm处沿正中线切开皮肤，分离胸舌骨肌，再沿气管侧壁分离其结缔组织。在气管两侧的结缔组织中可见到一根粗的白色神经，即是迷走神经。用玻璃分针将其分离2～2.5 cm,在其下穿一根线备用,用浸透
生理盐水的棉球覆盖,防止干燥。
3.分离颈动脉 见图7.10-8,在食管侧面找到颈动脉,分离出来,下面穿一根线备用。
4.动脉插管插入 剪去股部羽毛。先用手摸出股二头肌和股肌膜张肌的肌间沟，用镊子夹住股部皮肤，沿肌间沟切开皮肤3～4 cm，再用止血钳钝性分离，在约1 cm深处可看到纵行的股动脉、股静脉和与它们平行的坐骨神经（图7.10-9）。用弯头眼科镊轻轻分离出股动脉，在其下穿双线，将股动脉提起，此时要特别注意血管分支，最好进行结扎剪断。在远心端进行结扎，近心端用套有乳胶套膜的动脉夹夹住股动脉。在动脉夹和远心端结扎之间，用眼科剪向近心端剪一斜口，将装有肝素的动脉插管插入，结扎并固定。
5.验项目可参考上述实验内容。
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