目的要求: 了解病毒形态检查、分离培养常用的方法;熟悉病毒血清学诊断技术的原理和常用方法;了解分子生物学诊断技术PCR法的原理、操作及应用。 实验性质:演示 实验内容: 一、电子显微镜下病毒形态观察 含有高浓度病毒颗粒的样品,可直接应用电镜技术(electromicr
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  • 病毒试验技术

  • 点击:    作者:51protocol   来源:51protocol 日期:2007-05-09    本站论坛
(二)血凝抑制试验   流感病毒的血凝性,可被免疫血清中的特异性抗体所抑制,此试验称血凝抑制试验,常用于流感病毒等粘病毒或副粘病毒的鉴定。具体方法如下:
  材  料   1.流感病毒感染的鸡胚尿液(4u/0.25ml)
  2.病人血清
  3.0.5%鸡红细胞悬液
  4.生理盐水
  5.吸管、小试管等。
  方  法   1.排列小试管10支于试管架上。
  2.按表9-3顺序等倍稀释诊断血清,将第1管的10倍稀释血清0.25ml移至第10管作为血清对照,同时再从第1管弃掉0.25ml,使管内血清量与其他管一致。
  3.向各管加入流感病毒0.25ml。
  4.向各管加入0.5%鸡红细胞悬液各0.25ml。
  5.摇匀后置室温30-60分钟后观察结果。
    
结果观察
  判定各管血细胞凝集的情况,方法与流感病毒血凝试验相同。
  血凝抑制效价:完全抑制血细胞凝集的血清最高稀释度即为该血清的血凝抑制效价。如完全抑制到第5管,则效价为1:160。
  鉴定病毒时,效价应与原免疫血清效价相等或相似。血凝抑制试验亦可用已知病毒抗原,测定病人血清抗体以进行血清学诊断,恢复期比初期抗体效价增高4倍以上才有诊断意义。

六、乙型肝炎病毒的血清学检测法  乙型肝炎病毒目前培养困难,临床主要测定乙型肝炎病毒的各种抗原和抗体做辅助诊断。实验室常用对流免疫电泳法及反向间接血凝法。目前临床上多用固相酶联免疫吸附试验(ELISA)。
  理  采用双抗体夹心法,将特异性抗-HBs吸附于固相载体表面,当加入待检血清中相应的HBsAg时,结合形成Ag-Ab复合物,加入过氧化物酶标记的抗-HBs酶结合物,有酶相应底物存在情况下,产生颜色变化,用肉眼判读或酶标仪测定结果。
  材 
  1.包被液:0.2M pH9.6的碳酸盐缓冲液
  2.洗涤液:0.02M pH7.4的PBS-Tween20(0.05%)液.
  3.酶结合物:用辣根过氧化物酶标记的抗-HBs
  4.酶抗体稀释液:0.01M pH7.4的PBS-Tween20(0.05%)液
  5.酶底物液:邻苯二胺(OPD)10mg溶于pH5.0的磷酸盐-柠檬酸缓冲液25m1中,临用前加入30%H2O212ml。新鲜配制,避光
  6.中止液:2M H2SO4
  7.待检血清、阳性血清、阴性血清
  8.聚苯乙烯微量板,微量移液器,吸头等
  方  法   1.包被:用包被液稀释抗-HBs为50ug/ml,加入微量板100ul/孔,置40℃过液后,用洗涤液洗3次每次3~5min。
  2.加样:加入稀释为1/50的待检血清100ml/孔每个标本作2孔,同时作阳性、阴性和空白对照,置37℃ 2h后洗涤3次。
  3.加酶结合物:加入经适当稀释的酶结合物100ul/孔,置37℃ 2h后洗涤3次。
  4.加底物液100ul/孔,避光置于37℃ 20~30min。
  5.中止反应:加1滴/孔中止液。
  结  果   肉眼判读时,待测孔颜色与阴性对照一样或更浅,判为阴性。若明显加深,呈黄棕色,判为阳性。用酶标仪检测时,P/N值>2.1为阳性,<2.1为阴性。P为被检标本OD值,N为阴性对照OD值。
  诊断结果:
  1.称大三阳,为慢性肝炎,处于活动期。有较强的传染性。
  2.称小三阳,为慢性携带者,乙肝已趋向恢复,传染性弱,如持续时间过久,可转化为肝癌。   3.感染阶段或慢性乙肝表面抗原携带者,传染性弱。
  4.感染过乙肝病毒,具有一定的免疫力,为不典型的恢复期或为急性乙肝感染期。
  5.乙肝感染,为肝炎恢复期,少数人仍有传染性。
  6.去有乙肝感染或现在正处于急性感染。
  7.前打过乙肝疫苗或以前感染过乙肝。
  8.性乙肝恢复期,以前感染过乙肝。
  9.急性感染早期或者慢性乙肝表面抗原携带者,传染性弱。
  10.慢性乙肝表面抗原携带者,较易转阴,或者是急性感染,趋向恢复。
  11.早期乙肝感染,或慢性携带者,传染性强。
  12.急性乙肝感染趋向恢复,或者为慢性携带者。
                                                       
七、PCR方法检测病原微生物
  多聚酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)是一种模拟天然DNA复制过程,在体外扩增特异性DNA(或RNA)片段的新技术。本实验是将待检双链DNA经94℃高温变性成单链作模板,然后加入一对人工合成的寡核苷酸引物,引物分别与待扩增DNA片段的两端互补,经55℃低温退火,引物与模板互补结合。在72℃条件下,结合于模板上的引物在DNA聚合酶的催化下,利用反应体系中的4种dNTP为原料,按碱基互补配对的方式延伸合成两条新的DNA链。经过20-30个周期后,特异的目的DNA可扩增百万倍以上。PCR产物经琼脂糖凝胶电泳后即可观察到特异的扩增条带。
  PCR方法操作简便,灵敏度高,可检测出少至0.1pg的目的DNA。目前已广泛应用于多种病原微生物及寄生虫的检测。
 材  料  1.无菌双蒸水、石蜡油、溴化乙锭
  2.10×PCR反应缓冲液
  3.25mmol dNTP混合液
  4.引物1,引物2各50pmol/u1
  5.模板DNA
  6.5U/ul Taq DNA聚合酶
 仪  器  1.PCR扩增仪
  2.电泳仪
  3.紫外线分析仪
 方  法  1.在0.5m1EP管中,加入以下成分:
  10×PCR反应缓冲液 5u1
  引物1 2ul
  引物1 2ul
  模板DNA 10u1
  dNTP混合液 4ul
  Taq DNA聚合酶 1ul
  无菌双蒸水 加至 50ul
  混匀, 加50 ul石蜡油,防止样品水分蒸发。
  2.将反应管置于PCR仪中,94℃变性4min。然后按94℃变性30s→55℃退火30s→72℃延伸1min,循环35次后,72℃延伸10 min。
  3.反应完成后,取l0ul PCR扩增液,加至2%琼脂糖凝胶中进行电泳,电压100V,电泳30~60min后,置紫外线分析仪下观查扩增结果。

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