免疫荧光实验方法及分类
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免疫荧光实验方法及分类

点击:   作者:   来源:  时间: 2007-11-14  本站论坛

       (4)影响标记的主要因素 
       温度、时间、酸碱度和标记量4个因素。温度低,标记时间长,温度高,标记时间应短。FITC0-4℃以6-12h为宜,20-25℃以1-2h为宜,37℃30-45min为宜。pH低时,标记较慢,pH值偏高(大于10),抗体易变性,pH值9.0-9.5最为适宜。抗体蛋白含量低,标记慢,以每毫升含20-25mg蛋白为宜。至于标记方法,各有特点,但均不能去除非特异荧光染色因素。透析法适用于小体积的标记。
       3)标记抗体的纯化 
       抗体标记以后,应立即进行纯化处理,以消除或降低非特异性染色和特异交叉染色。其步骤如下:
       标记抗体溶液
       ↓透析或凝胶过滤
       去除游离荧光色素
       (粗制荧光抗体)
       ↓DEAE-纤维素层析
       去除过度标记的蛋白分子
       (精制荧光抗体)
       ↓抗原交叉吸收或组织制剂吸收
       去除特异交叉反应的标记杭体
       (免疫纯荧光抗体)
       根据免疫荧光试剂的具体用途,纯化的方法可以不同,并不是每一种荧光试剂都须经过以上全部过程。对于某些细菌诊断试剂,只要除去游离荧光素就可以,检测病毒抗原的荧光抗体一般要求下述处理:
       (1)游离荧光素的去除 
       去除标记过程中未与蛋白质结合的游离荧光素,是纯化标记试剂的最基本要求,不经过这一步处理,任何免疫荧光试剂都不能应用。
       ① 半透膜透析法 
       利用荧光色素分子可以通过半透膜,而蛋白分子则因分子量大不能通过的原理,逐步将游离色素除去。先将标记好的抗体溶液装于透析袋或玻璃纸袋内,注意使液面上留有一定空间,扎紧袋口,先用流动自来水透析5 min,再转入PBS ( 0.01mol/L,pH7.2)或生理盐水中继续透析,外液量至少大于内液量100倍,透析应在低温(0-4℃)下进行,每天换液3-4次,整个透析时间约需1周左右,时间过长容易造成蛋白质变性,影响荧光抗体的质量。取透析液(外液)以紫外线灯检查,若无荧光出现,即可停止透析。
       ② 凝胶过滤法 
       利用荧光色素分子和蛋白质分子量的悬殊差别,通过分子筛除去游离荧光素,一般1h以内即能完成操作,但最好与透析法结合进行。先将标记抗体溶液透析4 h,除去大部分游离荧光素和其他小分子物质以后,再进行凝胶过滤,这样有利于保护凝胶柱,延长使用时间。凝胶柱sephadex G25和G50装好后,以洗脱液(0.001mol/L或0.005mol/L PBS,pH7.0-7.2)平衡,然后加入样品,样品与柱床容积的比例1:2以下皆可。样品全部进入柱床后,即可进行洗脱。应用此法可使游离荧光素完全除去,同时荧光抗体可以100%回收。
       (2)过度标记的蛋白分子的去除 
       去除游离荧光素后,结合物中存在的未标记的和过度标记的蛋白质,是降低染色效价和出现非特异性染色的主要因素。常用的方法是DEAE-纤维素或DEAD-葡聚糖凝胶层析,结合物通过层析柱后,过度标记的部分(易出现非特异性)被吸附,过低标记的或未标记的部分(易降低敏感性)自由流出,从而可以得到荧光素与蛋白质结合比最适的部分。
       DEAD-纤维柱用PBS平衡后,柱上端放一大小合适的滤纸片,打开下口,调解流速至每分钟10-20滴左右,待柱上液面剩一薄层PBS时,用吸管滴加标记样品,样品进入柱床尚离一薄层时,用适量PBS冲洗管壁,然后用大量0.01mol/L,pH7.2PBS洗脱,用20%磺基水杨酸液试测洗脱液。待蛋白出现阳性反应时即可收集,蛋白反应阴转时停止收集,该洗脱液即为纯化的标记抗体。
       (3)特异交叉或额外应用性标记抗体的去除 
       去除特异交叉或额外应用标记抗体,常用组织粉末吸收法,最常用的是肝粉,这一步处理对标记的抗体来说,损失是很大的,一般可省去这一步。
       4)标记抗体的鉴定 
       经过以上各种程序所获得的精制荧光抗体,使用前须做特异性测定、敏感性鉴定以及纯度测定后,才可正式用于荧光抗体染色。
(4)荧光抗体染色
       1)标本的固定 
       在荧光抗体试验中,染色标本的固定是个很重要的步聚。通过固定,不仅要使标记的抗体易于接近抗原,从而发生反应,而且要求标本中的抗原的活性不受损失,同时还要保护其自然形态和位置。因此,根据所研究的抗原和组织细胞种类的不同,相应地采用不同的固定方法。应用最广泛的固定液是丙酮和乙醇,其次是甲醇、甲醛、丙烯醛等。切片标本大多用乙醇固定,组织培养标本主要用丙酮固定。固定液的浓度:丙酮为100%,乙醇为100%或95%,甲醛为10%,甲醇为100% 。固定的温度和时间变化很大,温度从-70℃至37℃都有应用,时间一般在10-30min。
       2)染色
       (1)直接染色法
       可用于传染性法氏囊病毒、传染性喉气管炎病毒、传染性支气管炎病毒、沙门氏菌等禽病病原的检测。
       ① 于标本片上滴加适当稀释的荧光抗体,置湿盒内,37℃感作30min后取出。
       ② 先以pH7.2PBS冲洗,继以自来水冲洗5min左右,最后以蒸馏水冲洗,自然干燥或吹干。
       ③ 滴加缓冲甘油封片(无荧光甘油9份,pH7.2PBS 1份)镜检。
       ④ 对照的设立
       应用直接法作首次染色试验时必须设置以下对照,随后试验时可酌情减少
       标本自发荧光对照:已知抗原标本加1-2滴PBS或不加,应无荧光出现。

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